Sarocladium strictrum T4 İZOLATI İLE STERİL OLMAYAN KÜLTÜR KOŞULLARI ALTINDA KAYISI POSASI VASATINDA PEKTİNAZ ENZİMİNİN ÜRETİMİ
DOI:
https://doi.org/10.24925/turjaf.v11i10.1834-1838.6044Anahtar Kelimeler:
Apricot pulp- Pectinase- Sarocladium strictum T4Özet
Bu çalışmada; meyve bahçeleri topraklarından pektin parçalama aktivitesi gösteren 34 küf izole edilmiştir. Bu izolatlar ile kesikli sistemde, steril olmayan kültür koşulları altında, pektinaz grubu enzimlerden; pektin liyaz ve poligalakturonaz enzimlerinin üretimine yönelik çalışmalar yapılmıştır. Poligalakturonaz aktivitesi gösteren 5 izolat; T1, T2, T3, T4, T5 olarak kodlanmıştır. Bunlar arasında en iyi poligalakturonaz aktivitesi 354,4 U/L olarak T4 izolatında belirlenmiş ve optimizasyon çalışmalarına bu izolat ile devam edilmiştir. Optimizasyon parametreleri olarak; başlangıç kayısı posası konsantrasyonu, sıcaklık,pH ve inkübasyon süreleri denenmiştir. Başlangıç kayısı posası konsantrasyonu 5-100 (g/L) aralığında değiştirilerek, enzim aktiviteleri üzerine etkileri araştırılmış ve T4 izolatı ile maksimum poligalakturonaz aktivitesi 50 g/L de 397,4 U/L olarak belirlenmiştir. pH parametresi pH = 3 - 8 arasında birer birim arayla, sıcaklık da 5-25°C aralığında 5’er birim artırılarak çalışılmıştır. Sonuç olarak maksimum poligalakturonaz aktivitesi pH 5 de 405,7 U/L ve 15°C’de 406,3 U/L olarak belirlenmiştir. İnkübasyon süresi 1-5 gün aralığında çalışılmış ve maksimum poligalakturonaz aktivitesi 4.gün (96 saat sonra) 429,0 U/L olarak belirlenmiştir. Yukarıda bahsedilen optimizasyon çalışmalarının yapıldığı T4 izolatı moleküler yöntemlerle Sarocladium strictum T4 olarak tanılanmıştır.
Referanslar
Abbasi H, Fazaelipoor HM. 2010. Pectinase production in a defined medium using surface culture fermentation. Int. J. Ind. Chem., 1 (1), 5-10. ISSN : 2228-5547
Antranıkıan G, Vorgıas EC, Bertoldo C. 2005. Extreme Environments as a Resource for Microorganisms and Novel Biocatalysts. Adv Biochem Engin/Biotechnol, 96, 219–262. doi: 10.1007/b135786
Debinga J, Peijuna L, Stagnittib F, Xianzheb X, Lic L. 2005. Pectinase Production by Solid Fermentation from Aspergillus Niger by a New Prescription Experiment. Ecotoxicol Environ. Saf., 64 (2), 244-250. Doi: https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2005.01.002
Femenıa A, Sanchez ES, Sımal S, Rosello C. 1998. Development and Ripening-Related Effects on the Cell Wall of Apricot Fruit. J. Sci. Food Agr., 77, 487–493. Doi: https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0010(199808)77:4<487::AID-JSFA70>3.0.CO;2-T
Fogarty WM, Kelly CT. 1983. Pectic enzymes. In: Microbial enzymes and biotechnology. W.M. Fogarty (Ed.), Applied Science Publishers, London, England, 131-182. doi: 10.1007/978-94-009-0765-2
Güner A, Akata I, Akgül H, Akyüz E, et al., 2020. Türkçe Mantar Adları (Turkish Fungi Names). In: Sesli, E., Asan, A. & Selçuk, F. (eds.). Türkiye Mantarları Listesi (The Checklist of Fungi of Turkey). Ali Nihat Gökyiğit Vakfı Yayını. İstanbul.
Hoondal GS, Tiwari RP, Tewari R, Dahiya N, Beg QK. 2002. Microbial alkaline pectinases and their applications: A review. ISO4 Standard Appl. Microbiol. Biotechnol., 59, 409-418. Doi: https://doi.org/10.1007/s00253-002-1061-1
Jayani RS, Saxena S, Gupta R. 2005. Microbial pectinolytic enzymes: A review. Process Biochem., 40 (9), 2931-2944. Doi: https://doi.org/10.1016/j.procbio.2005.03.026
Morıta Y, Hasan Q, Sakaguch IT, Murakamı Y, Yokoyama K, Tamıya E. 1998. Properties of a cold-aktif protease from psychrophic Flavobacterium balustinum P104. Appl. Microbiol. Biotechnol., 50, 669-675. Doi: https://doi.org/10.1007/s002530051349
Nimnoi P, Lumyong S. 2011. Improving solid-state fermentation of Monascus purpureus on agricultural products for pigment production. Food Biopro Technol, 4:1384-1390. doi: 10.1007/s11947-009-0233-8
Patil SR, Dayanand A. 2006. Production of pectinase from deseeded sun Xower head by Aspergillus niger in submerged and solid-state conditions. Bioresour. Technol, 97, 2054–2058. Doi: https://doi.org/10.1016/j.biortech.2005.09.015
Roe B, Bruemmer JH. 1981. Changes in Pectic Substances and Enzymes During Ripening and Storage of ‘Keitt’ Mangos. J. Food Sci., 46, 186–189. Doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.1981.tb14560.x
Saad N, Briand M, Gardarin C, Briand Y, Michaud P. 2007. Production, purification and characterization of an endopolygalacturonase from Mucor rouxii NRRL 1894. Enzyme Microb. Technol., 41 (6-7), 800-805. Doi: https://doi.org/10.1016/j.enzmictec.2007.07.012
Saito K, Takakuwa N, Oda Y. 2004. Purification of the extracellular pectinolytic enzyme from the fungus Rhizopus oryzae NBRC 4707. Microbiol. Res., 159, 83-86. Doi: https://doi.org/10.1016/j.micres.2004.01.001
Sanchez S, Demain AL. 2011. Enzymes and Bioconversions of industrial. Pharmaceutical, and Biotechnological Significance, Org. Process Res. Dev., 15, 224-230. Doi: https://doi.org/10.1021/op100302x
Souza JVB, Silva ES, Maia MLS, Teixeira MFS. 2003. Screening of Fungal Strains for Pectinolytic Activity: Endopolygalacturonase Production by Peacilomyces clavisporus 2A.UMIDA.1., Process Biochem., 39, 455-458. Doi: https://doi.org/10.1016/S0032-9592(03)00092-X
Tepe Ö. 2012. Bacillus Pumilus (Nrrl B-212) ile Pektin ve Tarımsal Atıklardan Pektinaz Üretiminin İncelenmesi. Doktora Tezi, Fırat Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Elazığ.
Uzuner S, Çekmecelioğlu D. 2016. Gıda atıklarının pektinaz enzimi üretiminde kullanımı. Gıda, Derleme, 41 (4), 259-266. doi: 10.15237/gida.GD15076
Velmurugan P, Hur H, Balachandar V, et al 2011. Monascus pigment production by solid-state fermentation with corn cob substrate. J Biosci Bioeng, 112:590-594. Doi: https://doi.org/10.1016/j.jbiosc.2011.08.009
Wang X, Chen Q, Lü, X. 2014. Pectin extracted from apple pomace and citrus peel by subcritical water. Food Hydrocoll, 38, 129–137. Doi: https://doi.org/10.1016/j. foodhyd.2013.12.003
İndir
Yayınlanmış
Nasıl Atıf Yapılır
Sayı
Bölüm
Lisans
Bu çalışma Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License ile lisanslanmıştır.
